Videnskab
 Science >> Videnskab >  >> nanoteknologi

CRISPR-drevne optotermiske nanotweezere

På hinanden følgende mikroskoprammer, der viser processen med indeslutning, frigivelse og translokation af guld-nanopartikler. a En ramme-for-ramme-sekvens af DNA@AuNS-indfangning og frigivelse, den stiplede cirkel angiver indfangningsområdet. b En ramme-for-ramme-sekvens af translokationen af ​​en klynge af fanget DNA@AuNS'er. Lasereffekten er 0,33 mW, AuNS- og PEG-koncentrationen er henholdsvis 100 μM og 10% (vægt%). Skalerbar = 4 μm. Kredit:Light:Science &Applications, doi:10.1038/s41377-023-01326-9

Optotermiske nanoweezer er en innovativ optisk designmetode, der har revolutioneret klassiske optiske teknikker til at fange en bred vifte af nanopartikler. Mens det optotermiske temperaturfelt kan bruges til in situ regulering af nanopartikler, er der stadig udfordringer med at identificere deres potentiale til at regulere bionanopartikler.



For at observere de synergistiske virkninger af optotermisk manipulation og CRISPR-baseret biodetektion (Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats), udviklede forskerne en kombination af CRISPR-drevne optotermiske nanoweezere forkortet CRONT.

I en ny rapport i Light:Science &Applications , Jiajie Chen og et forskerhold inden for optoelektronikteknik, biomedicinsk teknik og fysik, opnåede dette ved at udnytte diffusioforese og termo-osmotiske strømme til optotermisk excitation ved succesfuldt at berige DNA-funktionaliserede guldnanopartikler, CRISPR-associerede proteiner og DNA-strenge.

Forskerne byggede på et optotermisk skema for at forbedre CRISPR-associeret enkelt-nukleotid polymorfi detektion på enkelt molekyle niveau, for at introducere en ny CRISPR-baseret metode til at observere nukleotid spaltning. Forskerne studerede denne innovative tilgang som et universelt område for diagnostik, biofotonik og bionanoteknologi.

Optisk pincet

I 1986 opfandt Arthur Ashkin en optisk pincet til at fjernregulere nanoobjekter og modtog en Nobelpris i fysik i 2018 for denne banebrydende opdagelse og bidrag til biologiske systemer. Mens en klassisk optisk pincet er afhængig af lysets momentumtransformation, har tværfaglige kombinationer på tværs af plasmonisk optik, elektrisk felt og temperatur effektivt adresseret grænserne.

En række innovative tilgange er dukket op for at tilbyde nye muligheder inden for partikelanalyse og regulering. Optotermiske nanotweezere bruger optisk-inducerede termodynamiske kræfter til at regulere nanopartikler i mikron-skalaen med sub-mikron præcision.

Sammenlignet med traditionelle optiske pincetter kræver optotermiske pincet en lavere effekttæthed, hvilket gør dem til et attraktivt alternativ til biologisk detektion, samtidig med at de reducerer de negative optiske virkninger på biologiske prøver. Da termiske effekter spiller en nøglerolle under en række biologiske processer, er det muligt at udnytte temperaturfeltets muligheder til praktiske anvendelser.

Metoden kan bruges til at regulere bionanopartikler lige fra mikro- til nanoskala til at omfatte bakterier og levende celler samt enkelt- og dobbeltstrengede DNA-molekyler og proteiner.

Translokation af en DNA@AuNS-klynge. Kredit:Light:Science &Applications, doi:10.1038/s41377-023-01326-9

Kombinering af CRISPR med nanotweezer – CRONT

Det clustered regular interspaced short palindrome repeat (CRISPR) system tilbyder i sig selv et bemærkelsesværdigt genredigeringsværktøj, som også modtog en Nobelpris i 2020. Metoden omfattede et CRISPR-associeret nukleaseprotein og et mål-DNA-specifikt guide-RNA.

Biofysikere og bioingeniører er i stigende grad ivrige efter at forbedre følsomheden og alsidigheden af ​​DNA-detektion ved at kombinere CRISPR-Cas-systemet med nye sensing-tilstande.

For at overvinde de eksisterende grænser for metoden designede Chen og kolleger en universelt anvendelig optotermisk tweezing-platform kendt som CRISPR-drevne optotermiske nanoweezere til at identificere bionanopartikler og brugte opsætningen til at identificere in situ DNA-molekyler uden nukleinsyreamplifikation. Eksperimenterne gav ultralave detektionsvolumener ved 10 μL for at identificere enkeltnukleotidpolymorfier for at studere genetisk diversitet, sygdomsmodtagelighed og lægemiddelrespons for at imødekomme de fremtidige krav fra genomisk forskning og medicin.

Arbejdsprincippet

For at aktivere CRONT (CRISPR-drevne optotermiske nanotweezer) designede forskerne et mikrofluidkammer med et tyndt lag guldfilm aflejret på dækglasset. Da holdet bestrålede guldfilmen med laserbelysning, genererede de et temperaturfelt omkring laserpletten. Forskerne detaljerede de optimale betingelser for CRISPR-reaktioner og påbegyndte spaltningen af ​​DNA-guld nanofilm-konjugatet ved hjælp af mørkfeltsmikroskopi.

De tilføjede en ikke-ionisk polymer af polyethylenglycol (PEG) i vandopløsningen som et biologisk overfladeaktivt middel for fremragende biokompatibilitet.

Tilstedeværelsen af ​​flere nanopartikler og deres varierende termoforetiske mobilitet genererede en tydelig koncentration af opløst stof. Når opløste stoffer med øgede koncentrationer påvirkede dem med lavere koncentrationer gennem osmotisk tryk, resulterede resultaterne i en interaktion kendt som den diffusioforetiske kraft. Denne systematiske undersøgelse fremhævede potentialet for, at CRONT kan inkluderes til at udføre biomolekylær identifikation.

CRONT-system til nukleotiddetektion og identifikation. a) Et enkelt DNA@AuNS fanges af CRONT ved laseropvarmningsområdet. Opvarmningslaseren slukkes ved 28,8 s, og spaltning observeres efterfølgende. b) Indfangningsstivhedsmålinger ved varierende lasereffekter i x/y-retning, med den stiplede linje, der angiver den maksimale stivhed ved 0,5 mW. c) Positionsfordeling af det fangede enkelt DNA@AuNS ved 0,5 mW. d) Lysintensitetsvariation af et fanget DNA@AuNS under laseraktiveringen. Mål-ssDNA'et er fra en del af Monkeypox (MP)-virussekvensen. Rammer blev optaget ved hjælp af mørkfeltsmikroskopi, og skalaen er 2 μm. e) Sandsynlighed for spaltning af DNA@AuNS ved forskellige target ssDNA (MP) koncentrationer. f) Spaltningssandsynlighed ved forskellige crRNA- og mål-ssDNA-kombinationsgrupper (A-E) til specificitetstest, mål-ssDNA-koncentrationerne er 250 fM. g) Sandsynlighed for spaltning af DNA@AuNS ved forskellige mål-dsDNA (MP)-koncentrationer. Den optiske effekt indstillet til 0,5 mW i (a), (c–g). h) Spaltningssandsynlighed for DNA@AuNS under dsDNA ved en lavere optisk effekt på 0,16 mW, det indsatte angiver temperaturfordelingen. Hver indfangningshændelse blev udført i 2 min., og hvert datapunkt omfattede 10-17 fangsthændelser over en 40-minutters periode. Hver koncentration blev testet tre gange. PEG-massefraktionen er 10%. Koncentrationen af ​​AuNS og Cas12a er henholdsvis 0,5 μM og 0,125 nM. Kredit:Light:Science &Applications, doi:10.1038/s41377-023-01326-9

Optotermisk kombination af proteiner og DNA'er

For at muliggøre CRISPR-drevne optotermiske nanotweezere studerede Chen og kolleger aggregeringsadfærden af ​​proteiner og DNA'er ved at bruge fluorescensmærkning, hvor længden af ​​den stive stilk genererede en polyethylenglycolkoncentrationsgradient. Mens en højere lasereffekt ikke kontinuerligt øgede akkumuleringshastigheden på grund af et forstørret termo-osmotisk flow, var akkumuleringen af ​​enkeltstrenget DNA højere end dobbeltstrenget DNA. Mens proteinakkumulering sjældent studeres i biofysik, viste de fluorescens-mærkede Cas12a-proteiner en tendens til at danne små ringlignende ophobninger, hvor øget lasereffekt øgede deres akkumuleringshastighed.

Holdet udførte desuden eksperimenter på almindeligt inkorporerede proteiner såsom bovint serumalbumin med FITC-mærkning. I nærvær af et optotermisk felt forblev denne proteinfordeling tilfældig og upåvirket af tilstedeværelsen af ​​polyethylenglycolmolekyler.

CRISPR-drevne optotermiske nanotweezer (CRONT) til at identificere nukleotider

Chen og teamet bemærkede, hvordan det optotermiske felt forbundet med de CRISPR-drevne optotermiske nanotweezere (CRONT) gav en passende temperatur til CRISPR-baseret biodetektion med kapaciteten til at berige bionanopartikler til at detektere DNA ved ultralave koncentrationer, i stedet for Brownsk bevægelse alene, dvs. styret gennem detektion af diffusion.

Forskerne inkluderede CRISPR-12a-skemaet til at undersøge enkeltstrenget omgivende DNA. CRONT-systemet identificerede med succes DNA'er på enkeltmolekyleniveau for enkeltnukleotidpolymorfismer med høj sensitivitet og specificitet.

Outlook

På denne måde inkorporerede Jiajie Chen og kolleger diffusioforese og termo-osmotiske strømme i grænselaget af en optotermisk responsiv film for at vise en ny metode til at regulere CRISPR-drevne optotermiske nanoweezer på nanoskala.

Denne metode tillod den øjeblikkelige implementering af CRISPR-baseret biosensing med et ultralavt detektionsvolumen.

Optisk pincet er udstyret med DNA-identifikation gennem CRISPR-baserede biosensing-systemer som en vej til biomolekyleberigelse for at spalte CRISPR-komplekset. Sådanne CRISPR-drevne optotermiske nanotweezere eller CRONT-systemer har et enormt løfte om at fremme forståelsen af ​​komplekse biologiske processer som en alsidig detektionssonde på tværs af biomedicinsk forskning, lægemiddelopdagelse og sygdomsdiagnostik.

Flere oplysninger: Jiajie Chen et al., CRISPR-drevne optotermiske nanotweezere:Diverse bio-nanopartikelmanipulation og enkeltnukleotididentifikation, Light:Science &Applications (2023). DOI:10.1038/s41377-023-01326-9

Journaloplysninger: Lys:Videnskab og applikationer

© 2023 Science X Network




Varme artikler